2×mieszanka PCR bogata w GC

Hi-fidelity PCR MasterMix dla szablonów o wysokiej zawartości GC.

Ten produkt to 2x MasterMix zawierający polimerazę DNA Taq Plus, dNTPs, MgCl2, bufor reakcyjny, wzmacniacz PCR, optymalizator i stabilizator. Ma zalety szybkiej amplifikacji, prostoty, wysokiej czułości, silnej specyficzności, dobrej stabilności i tym podobnych, a także może w największym stopniu zmniejszyć błędy operacyjne. Nadaje się do reakcji PCR z wysoką wiernością i amplifikacji matryc o złożonych strukturach, takich jak wysoka zawartość GC i struktura drugorzędowa. Może skutecznie amplifikować fragmenty do 20 kb za pomocą prostych szablonów i do 10 kb fragmentów za pomocą złożonych szablonów.

Kot. Nie Wielkość opakowania
4992794 500 μl
4992795 500 μl

Szczegóły produktu

FAQ

Tagi produktów

Cechy

■ Wysoce wydajna amplifikacja docelowych fragmentów o wysokiej zawartości GC: Zoptymalizowany system buforów i unikalna formuła są pomocne w topieniu matryc o wysokiej zawartości GC, maksymalizując wydajność amplifikacji polimerazy (GC%: 60%-75%).
■ Jest bardzo skuteczny w przypadku złożonych szablonów i szablonów ze strukturami drugorzędnymi.
■ Wysoka wierność: W PCR MasterMix zastosowano polimerazę o wysokiej wierności, aby zapewnić dokładność amplifikacji.
■ Wysokowydajny, super mocny i stabilny system mieszania wstępnego może zminimalizować błędy w obsłudze.

Wszystkie produkty można dostosować do potrzeb ODM/OEM. Dla szczegółów,kliknij opcję Dostosowana usługa (ODM/OEM)


  • Poprzedni:
  • Następny:

  • product_certificate04 product_certificate01 product_certificate03 product_certificate02
    ×
    P: Brak pasm wzmacniających

    Szablon A-1

    ■ Matryca zawiera zanieczyszczenia białkowe lub inhibitory Taq itp. ——Oczyść matrycę DNA, usuń zanieczyszczenia białkowe lub ekstrahuj matryce DNA za pomocą zestawów do oczyszczania.

    ■ Denaturacja szablonu nie jest kompletna —— Odpowiednio zwiększyć temperaturę denaturacji i przedłużyć czas denaturacji.

    ■ Degradacja szablonu — — Ponownie przygotuj szablon.

    Podkład A-2

    ■ Słaba jakość starterów —— Ponownie zsyntetyzuj starter.

    ■ Degradacja primera —— Rozdzielić primery o wysokim stężeniu do małej objętości w celu konserwacji. Unikaj wielokrotnego zamrażania i rozmrażania lub długotrwałego kriokonserwacji w temperaturze 4°C.

    ■ Niewłaściwe zaprojektowanie starterów (np. niewystarczająca długość startera, dimer utworzony między starterami itp.) - Przeprojektowanie starterów (unikaj tworzenia dimeru startera i struktury drugorzędowej)

    A-3 Mg2+stężenie

    ■ Mg2+ stężenie jest zbyt niskie ——Właściwie zwiększyć Mg2+ stężenie: Optymalizacja Mg2+ stężenie poprzez serię reakcji od 1 mM do 3 mM w odstępie 0,5 mM w celu określenia optymalnego Mg2+ stężenie dla każdej matrycy i startera.

    A-4 Temperatura wyżarzania

    ■ Wysoka temperatura annealingu wpływa na wiązanie startera i matrycy. —— Zmniejsz temperaturę wyżarzania i zoptymalizuj warunki z gradientem 2°C.

    A-5 Czas przedłużenia

    ■ Krótki czas przedłużenia——Wydłużenie czasu przedłużenia.

    P: Fałszywe pozytywne

    Zjawiska: Próbki ujemne również wykazują prążki sekwencji docelowej.

    A-1 Zanieczyszczenie PCR

    ■ Zanieczyszczenie krzyżowe sekwencji docelowej lub produktów amplifikacji ——Uważaj, aby nie odpipetować próbki zawierającej sekwencję docelową w próbce ujemnej ani nie wylać jej z probówki wirówkowej. Odczynniki lub sprzęt powinny być autoklawowane w celu wyeliminowania istniejących kwasów nukleinowych, a zanieczyszczenie powinno być stwierdzone poprzez eksperymenty z kontrolą ujemną.

    ■ Zanieczyszczenie odczynnikiem —— Podziel odczynniki i przechowuj w niskiej temperaturze.

    A-2 Primer

    ■ Mg2+ stężenie jest zbyt niskie ——Właściwie zwiększyć Mg2+ stężenie: Optymalizacja Mg2+ stężenie poprzez serię reakcji od 1 mM do 3 mM w odstępie 0,5 mM w celu określenia optymalnego Mg2+ stężenie dla każdej matrycy i startera.

    ■ Niewłaściwy projekt startera i sekwencja docelowa ma homologię z sekwencją inną niż docelowa. —— Przeprojektuj podkłady.

    P: Niespecyficzne wzmocnienie

    Zjawiska: Prążki amplifikacji PCR są niezgodne z oczekiwaną wielkością, albo duże, albo małe, lub czasami występują zarówno specyficzne prążki amplifikacji, jak i nieswoiste prążki amplifikacji.

    Podkład A-1

    ■ Słaba specyficzność startera

    —— Przeprojektuj podkład.

    ■ Stężenie podkładu jest zbyt wysokie ——Właściwie zwiększ temperaturę denaturacji i przedłuż czas denaturacji.

    A-2 Mg2+ stężenie

    ■ Mg2+ stężenie jest zbyt wysokie ——Właściwie zmniejsz stężenie Mg2+: Zoptymalizuj Mg2+ stężenie poprzez serię reakcji od 1 mM do 3 mM w odstępie 0,5 mM w celu określenia optymalnego Mg2+ stężenie dla każdej matrycy i startera.

    A-3 Termostabilna polimeraza

    ■ Nadmierna ilość enzymu —— Odpowiednio zmniejsz ilość enzymu w odstępach 0,5 U.

    A-4 Temperatura wyżarzania

    ■ Temperatura wyżarzania jest zbyt niska —— Odpowiednio zwiększyć temperaturę wyżarzania lub zastosować metodę wyżarzania dwuetapowego

    A-5 cykli PCR

    ■ Za dużo cykli PCR —— Zmniejsz liczbę cykli PCR.

    P: Niejednolite lub rozmazujące się paski

    Podkład A-1——Słaba specyficzność ——Przeprojektuj starter, zmień położenie i długość startera, aby wzmocnić jego specyficzność; lub wykonaj zagnieżdżoną reakcję PCR.

    A-2 Szablon DNA

    —— Matryca nie jest czysta —— Oczyść matrycę lub wyodrębnij DNA za pomocą zestawów do oczyszczania.

    A-3 Mg2+ stężenie

    ——Mg2+ stężenie jest zbyt wysokie ——Właściwie zmniejsz Mg2+ stężenie: Optymalizacja Mg2+ stężenie poprzez serię reakcji od 1 mM do 3 mM w odstępie 0,5 mM w celu określenia optymalnego Mg2+ stężenie dla każdej matrycy i startera.

    A-4 dNTP

    —— Stężenie dNTP jest zbyt wysokie —— Odpowiednio zmniejsz stężenie dNTP

    A-5 Temperatura wyżarzania

    ——Zbyt niska temperatura wyżarzania ——Odpowiednio zwiększyć temperaturę wyżarzania

    A-6 cykli

    ——Zbyt wiele cykli ——Zoptymalizuj liczbę cykli

    P: Ile matrycy DNA należy dodać w systemie reakcyjnym 50 μl PCR?
    ytry
    P: Jak wzmocnić długie fragmenty?

    Pierwszym krokiem jest wybór odpowiedniej polimerazy. Zwykła polimeraza Taq nie może dokonać korekty ze względu na brak aktywności 3'-5' egzonukleazy, a niedopasowanie znacznie zmniejszy wydajność wydłużania fragmentów. Dlatego zwykła polimeraza Taq nie może skutecznie amplifikować fragmentów docelowych większych niż 5 kb. Polimerazę Taq ze specjalną modyfikacją lub inną polimerazę o wysokiej wierności należy wybrać w celu poprawy wydajności wydłużania i zaspokojenia potrzeb amplifikacji długich fragmentów. Ponadto amplifikacja długich fragmentów wymaga również odpowiedniego dostosowania projektu startera, czasu denaturacji, czasu wydłużania, pH buforu itp. Zwykle startery o wielkości 18-24 pz mogą prowadzić do lepszej wydajności. Aby zapobiec uszkodzeniu matrycy, czas denaturacji w 94°C należy skrócić do 30 sekund lub mniej na cykl, a czas wzrostu temperatury do 94°C przed amplifikacją powinien być krótszy niż 1 min. Ponadto ustawienie temperatury wydłużania na około 68°C i zaprojektowanie czasu wydłużania na poziomie 1 kb/min może zapewnić skuteczną amplifikację długich fragmentów.

    P: Jak poprawić wierność amplifikacji PCR?

    Wskaźnik błędu amplifikacji PCR można zmniejszyć, stosując różne polimerazy DNA o wysokiej wierności. Spośród wszystkich dotychczas znalezionych polimeraz DNA Taq, enzym Pfu ma najniższy wskaźnik błędów i najwyższą wierność (patrz załączona tabela). Oprócz selekcji enzymów, naukowcy mogą jeszcze bardziej zmniejszyć szybkość mutacji PCR poprzez optymalizację warunków reakcji, w tym optymalizację składu buforu, stężenia termostabilnej polimerazy i optymalizację liczby cykli PCR.

    Napisz tutaj swoją wiadomość i wyślij ją do nas